使用举例：
Human TRANCE/RANK L/TNFSF11 （Catalog Number: DY626）为例：
如果客户购买 RND systems 的 duoset 未包被 ELISA kit，试剂盒提供： CaptureAntibody (1 vial) ，Detection Antibody (1 vial) ，Standard， Streptavidin-HRP (1 vial)；
BioTNT 提供的 ELISA 包被经济套装 3 EL-CPX 提供了包被需要的绝大多数试剂；经测试，比原试剂盒提供的缓冲液配方可以显著提高试剂盒的灵敏度，结合冻干工艺，可以达到良好的稳定性；并显著降低试剂盒的本底；
包被和检测实验示例：
一、包被液的配制：
coating buffer 包被缓冲液（EL-CPX01）：该试剂为 10X 浓缩液，使用前请根据实验用量，用蒸馏水稀释至 1X，即配即用，例：10ml coating buffer + 90ml蒸馏水；
Coating buffer 用于抗体的包被；可替代以 PBS 为主的包被液体；请用 1* Coating buffer 和适量抗体配成包被液，抗体浓度请参考抗体的说明。
二、包被实验示例：
在 ELISA 酶标板（EL-CPX02）中每孔加入 100ul 包被液（包被液若有剩余可多包被一点，以条为单位），在板上贴膜或者盖上盖子（防止异物进入板孔），室温（控制室温在 25℃，板放置处旁放置温度计控温）温育过夜（下午 4 点到第二天早上 9 点，不宜缩短时间，会降低包板效率）；结束温育（也请参考抗体说明书的包被条件进行相应调整）。多余的配好的包被液不能保存。
三、洗板封闭：
1) 将洗液 20×Wash Buffer（EL-CPX09）配制成 1×Wash Buffer（实验前请合理计算用量，配制成足够的量待用），用 1×Wash Buffer 洗板 4 次（注：包被组分在加稳定剂前不能剧烈震荡或完全干燥，所以洗板过程需快速、温和，不要拼命拍板）；
2) 洗板后立即加入 200ul 每孔的酶标板稳定剂（EL-CPX03），在板上贴膜 (EL-CPX11)，37℃温育 1 小时；
3) 弃掉或吸取酶标板稳定剂（注：拍干，千万不要洗板）。封闭好的酶标板可以有以下几种处理方式。
方式一：直接进行检测；
方式二：1) 冻干成品：把酶标板放入冰箱，-20℃冰箱冷冻过夜。
2) 调试真空冻干机，立即将冷冻过夜的酶标板放入真空冻干机冻干 24 小时；
3) 取出冻干的酶标板，立即将酶标板放入一个装有干燥剂的铝箔袋内（EL-CPX10），贴上标签，放 4℃冰箱长期保存。（冻干同时可进行标准品冻干）。
注意 备注： 如果酶标板不直接进行检测，必须采用进行干燥。干燥后的酶标板才可以稳定保存。一周内检测的酶标板可以冻存，不冻干。
四、检测方法示例
（请参考抗体说明，安排相应的检测方法，根据您的实验路线，如果是双抗夹心法，可以选择酶标二抗，也可以选择生物素二抗，采用生物素-亲和素的放大系统）：
实验示例：下面是双抗夹心法的实验示例：
1) 以上的酶标板已经预包被了抗体，选取相应的板条；
2) 标准品请用相应的稀释液稀释；如检测的是血清，标准品用 EL-CPX08 稀释；如果检测的是细胞上清样品或其他非血清样品，请用 EL-CPV03(需另购)稀释标准品；样本可以选择几个样本，做原倍不稀释，两倍稀释，10 倍稀释等梯度；
3) 酶标板中加入适量稀释好的标准品和样品，各100ul；
4) 37 度温育1到2 小时；
5) 洗板四次（洗液同上）；
6) 生物素二抗请根据说明书，用生物素（Biotin）稀释液（EL-CPV04）进行稀释；
7) 37 度温育 30 分钟；
8) 洗板四次；
9) 酶标二抗，请用（EL-CPV05）稀释；
10) 每孔加入 100ul 稀释好的酶标二抗，37 度温育 1 小时或其他时间；
11) 洗板四次；
12) 加入显色液：显色液 A，B（Substrate A，B）（EL-CPI03）；使用前请按按照A 液和B液 1：1 比例充分混匀，方可使用，使用前 15 分钟配置；每孔加入 50ul-100ul 混合后的显色液；室温温育 10-30 分钟：显色时间根据目测最高浓度标准品的颜色，应为深蓝色，630 读数，OD 值应在 0.7 以上；
13) 加入终止液（Stop Solution）（EL-CPI04）100ul 每孔。加入终止液 50ul-100ul，显色从蓝色转为黄色。建议采用 450-630 的双波读数。
注：根据实验设计不同的包被浓度，酶标二抗浓度，HRP 浓度，反应时间等变量，找到最优化的实验条件。确定试剂盒定量范围、灵敏度等试剂盒特性。
双抗夹心法可以回归为线性、二次曲线，或者四参数曲线；竞争法可以回归为 log-logit，或者四参数曲线；
五． 包被实验的验证实验设置
与预包被的elisa 实验不同，包被实验需要在第一次实验的实验验证如下实验情况：
1．确定一抗的包被浓度；一般来说试剂盒如果提供了浓度，就按照浓度来设置，如果没有提供的话，就按照经验来包被；
2．设定正交实验，确定标准曲线的范围，一般是倍半稀释拉梯度，8个或者更多，根据试剂盒提供的参数，可以选择拉8个梯度或者10个，如果没有提供参数，建议可以增加到16个梯度；
3．确定biotin二抗的稀释比；一般可以选择两个梯度来比较实验结果；
4．确定HRP的稀释比；一般可以选择两个到三个梯度来进行稀释；
5．根据正交实验结果来确定最终参数的选择，以及试剂盒的灵敏度和定量范围；
6．根据确定下来的参数，如标准品的浓度，定量范围，二抗的稀释比，HRP的稀释比，分装和冻干标准品；进行样本测试，得到试剂盒的板内差数据（CV值）；（冻干服务和详细的板内差CV测试不包含在1000元的服务内，属于增值服务）；